Введение
Жизненный цикл любого растения делится на разные периоды и фазы. Латентный период, как и прорастание семян, является ключевым этапом на начальной фазе роста и развития особи. Размножение растений семенами, основной метод воспроизводства вида, имеет особое значение для распространения и сохранения вида.
Анализ литературы показывает, что биологии прорастания семян многих видов семейства Cactaceae уделяют достаточно внимания (Bregman, Bouman, 1983; Rojas-AreHchiga, VaHzquez-Yanes, 2000; Rodríguez-Ortega et al., 2006; Gurvich et al., 2008; Larrea-Alcázar, López , 2008; De la Rosa-Manzano, Briones, 2010; Martins et al., 2012; Sosa Pivatto et al., 2014; Bauk et al., 2017). На примере видов рода Mammillaria, произрастающих в Мексике, видно, что исследователи больше внимания уделяют только редким видам, произрастающим в природе (Flores-Martínez et al., 2002, 2008; Genis et al., 2002; Rodríguez-Ortega et al., 2006; Carbajal et al., 2010; Santini, Martorell, 2013).
Для рода Mammillaria было показано, что семена разных видов имеют не одинаковую массу 1000 шт.; при хранении она несколько снижается (на 5-15 %). Число семян в плодах видов рода Mammillaria варьирует от 3-10 до 70-100. Лабораторная всхожесть колеблется в широких пределах. Так семена, хранившиеся 6 лет в условиях лаборатории, начинают прорастать через 2 недели. Процесс растянут во времени (до 57 дней); при этом их всхожесть составила 47 %. Cемена, хранившиеся 5 лет, начинают прорастать лишь на 30 день опыта. Их лабораторная всхожесть (за 57 дней) достигла всего 36 %. Совершенно иная картина прорастания была отмечена у свежесобранных семян ряда видов рода Mammillaria. Начиная с 28 дня опыта, начали прорастать семена M. bocasana. Активное прорастание семян у M. columbiana отмечалось через 34-36 дней от начала проращивания, а у M. prolifera subsp. multiceps – на 46-48 день. M. parkinsonii – на 49 день опыта. За период наблюдения, в течение 65 дней, всхожесть свежесобранных семян 5 видов Mammillaria составила от 10 % (M. parkinsonii) до 94 % (M. columbiana) (Ткаченко, 2019).
Семена, собранные в местах естественного произрастания, часто имеют низкую всхожесть, что вызывает интерес к обработке репродуктивных диаспор разными стимуляторами. Было показано, что обработка химическими соединениями семян ряда видов, принадлежащих к родам Rebutia, Aylostera, Mediolobivia и Sulcorebutia (Cactaceae), выявила, что прорастание было оптимальным, когда семена погружали на 8 часов в водный раствор, который содержал нитрофенолат натрия (1,8 %), и процент прорастания уменьшался, когда использовали только водопроводную воду. Максимальная всхожесть получена для семян, которые погружены на 8 часов в водный раствор, который содержал 9 % нафталинуксусной кислоты. Прорастание полностью блокировалось, когда семена обрабатывали салициловой и ацетилсалициловой кислотами. Поскольку процесс получения новых растений у видов семейства Cactaceae достаточно сложен, накопление данных по повышению прорастания с использованием обработок разными химическими соединениями может быть полезной для семеноводства (Mihalte et al., 2011).
В коллекции Ботанического сада Петра Великого БИН РАН насчитывается около 1100 видов семейства Cactaceae. Значительное число из них ежегодно цветёт, некоторые виды цветут редко, многие виды образуют плоды ежегодно, ряд же видов образуют плоды с большим перерывом (от 2 до 5-7 лет). Собираемые семена используются как для поддержания вида в коллекции, так и включаются в Index seminum (Delectus) для последующего обмена между ботаническими садами и коллекционерами. Семена видов, которые редко цветут и не регулярно плодоносят необходимо хранить долго, в связи с чем и возникает вопрос об оценке качестве получаемых семян и максимальных сроках их хранения и возможности использования для выращивания.
Цель настоящей работы – выявить особенности латентного периода (определение числа семян в плоде, массы 1000 шт. семян, влияние длительности хранения семян на их всхожесть) ряда видов некоторых родов семейства Cactaceae, культивируемых в Ботаническом саду Петра Великого.
Объекты и методы исследований
Материалом служили как свежесобранные, так и хранимые в условиях семенной лаборатории от 3-5 до 7-12 лет семена 80 образцов некоторых видов следующих родов: Aylostera, Blossfeldia, Chilita, Cleistocactus, Copiapoa, Coryphantha, Discocactus, Echinocactus, Echinopsis, Eriosyce, Ferocactus, Frailea, Matucana, Mediolobivia, Melocactus, Neochilenia, Neomammillaria, Parodia и Rebutia, собранные с коллекционных растений, культивируемых в оранжереях Ботанического сада Петра Великого Ботанического института имени В. Л. Комарова РАН. Традиционно, плоды кактусов после сбора высушивали, и в таком виде они хранились в семенной лаборатории. Перед постановкой опытов плоды чистили, определяли число семян в плоде и массу 1000 штук семян. Всхожесть семян определяли в лабораторных условиях (при постоянной температуре 22-25° С и естественном освещении), в стандартных стеклянных чашках Петри на фильтровальной бумаге, смоченной водопроводной водой; без применения каких-либо стимуляторов или изменения светового и/или температурного режимов, с учётом методических рекомендаций (Ишмуратова, Ткаченко, 2009).
Настоящая работа является продолжением изучения особенностей латентного периода видов родов семейства Cactaceae, имеющихся в коллекции живых растений Ботанического сада Петра Великого БИН РАН (Tkachenko, 2011; Ткаченко, 2018, 2019).
Результаты и обсуждение
Данные для 80 образцов некоторых видов родов Aylostera, Blossfeldia, Chilita, Cleistocactus, Copiapoa, Coryphantha, Discocactus, Echinocactus, Echinopsis, Eriosyce, Ferocactus, Frailea, Matucana, Mediolobivia, Melocactus, Neochilenia, Neomammillaria, Parodia и Rebutia, полученные по числу семян в плоде, массе 1000 штук семян и их всхожести в зависимости от длительности хранения в условиях лаборатории, представлены в табл. 1.
Таблица 1. Число семян в плоде, масса 1000 штук семян и всхожесть некоторых видов семейства Cactaceae в зависимости от сроков хранения.
| Вид | Число семян в плоде, шт. | Масса 1000 шт. семян | Год сбора | Срок хранения годы | Всхожесть, % |
| Aylostera fiebrigii (Gürke) Backeb. | 19-48 | 0.27 (0.24–0.29) | 2012 | 1 | 58 |
| Aylostera fiebrigii (Gürke) Backeb. | 19-48 | 0.23 (0.20–0.27) | 2012 | 7 | 28 |
| Aylostera fiebrigii (Gürke) Backeb. | 15-49 | 0.25 (0.24–0.28) | 2013 | 6 | 37 |
| Aylostera fiebrigii (Gürke) Backeb. | 17-49 | 0.27 (0.24–0.29) | 2014 | 5 | 85 |
| Aylostera fiebrigii (Gürke) Backeb. | 17-49 | 0.27 (0.24–0.29) | 2014 | 3 | 100 |
| Aylostera fiebrigii (Gürke) Backeb. (= Aylostera donaldiana (A. B. Lau & G. D. Rowley) Mosti & Papini) | 20-29 | 0.36 (0.28–0.41) | 2012 | 7 | 91 |
| Aylostera fiebrigii (Gürke) Backeb. (= Aylostera donaldiana (A. B. Lau & G. D. Rowley) Mosti & Papini) | 15-28 | 0.36 (0.28–0.41) | 2014 | 5 | 65 |
| Aylostera kieslingii Rausch (= Rebutia kieslingii Rausch) | 17-53 | 0.27 (0.23-0.30) | 2014 | 5 | 95 |
| Aylostera kupperiana (Boed.) Backeb. | 12-49 | 0.28 (0.26–0.29) | 2010 | 9 | 22 |
| Aylostera pseudodeminuta (Backeb.) Backeb. | 19-39 | 0.33 (0.3–0.36) | 2010 | 9 | 44 |
| Aylostera pseudodeminuta (Backeb.) Backeb. | 24-48 | 0.28 (0.27–0.29) | 2012 | 7 | 38 |
| Aylostera pseudodeminuta (Backeb.) Backeb. | 15-49 | 0.28 (0.27–0.30) | 2013 | 6 | 72 |
| Aylostera pseudodeminuta (Backeb.) Backeb. | 16-49 | 0.26 (0.22–0.28) | 2014 | 5 | 62 |
| Aylostera pseudominuscula (Speg.) Speg. | 14-31 | 0.34 (0.33-0.35) | 2010 | 9 | 14 |
| Aylostera pseudominuscula (Speg.) Speg. | 20-33 | 0.35 (0.33-0.36) | 2013 | 6 | 37 |
| Aylostera spegazziniana (Backeb.) Backeb. | 14-53 | 0.32 (0.30–0.34) | 2012 | 7 | 10 |
| Aylostera spegazziniana (Backeb.) Backeb. | 12-53 | 0.49 (0.45–0.52) | 2013 | 6 | 19 |
| Aylostera spegazziniana (Backeb.) Backeb. | 11-52 | 0.43–0.44 | 2010 | 9 | 43 |
| Aylostera spinosissima (Backeb.) Backeb. | 15-49 | 0.22 (0.20–0.24) | 2010 | 9 | 5 |
| Aylostera spinosissima (Backeb.) Backeb. | 14-29 | 0.25 (0.24–0.26) | 2012 | 7 | 12 |
| Aylostera spinosissima (Backeb.) Backeb. | 18-29 | 0.27 (0.25–0.29) | 2013 | 6 | 29 |
| Blossfeldia liliputana Werderm. | 15-53 | 0.04 | 2012 | 7 | 6 |
| Blossfeldia liliputana Werderm. | 10-49 | 0.04 | 2013 | 6 | 12 |
| Chilita knebeliana (Boed.) Buxb. (= Mammillaria knebeliana Boed.) | 56–80 | 0.2–0.3 | 2012 | 7 | 66 |
| Cleistocactus smaragdiflorus (F. A. C. Weber) Britton & Rose | 180–220 | 0.44 (0.39–0.46 | 2014 | 5 | 63 |
| Copiapoa humilis (Phil.) Hutchison | 30–48 | 0.7 (0.68–0.74) | 2012 | 7 | 0 |
| Copiapoa humilis (Phil.) Hutchison | 30–40 | 0.8 (0.79–0.81) | 2013 | 6 | 3 |
| Copiapoa humilis (Phil.) Hutchison | 36–50 | 0.75 (0.72–0.77) | 2014 | 5 | 34 |
| Copiapoa humilis subsp. tenuissima (F. Ritter ex D. R. Hunt) D. R. Hunt | 25–35 | 0.69 (0.60–0.76) | 2012 | 7 | 0 |
| Copiapoa humilis subsp. tenuissima (F. Ritter ex D. R. Hunt) D. R. Hunt | 25–60 | 0.70 (0.68–0.74) | 2013 | 6 | 6 |
| Copiapoa humilis subsp. tenuissima (F. Ritter ex D. R. Hunt) D. R. Hunt | 38–52 | 0.64 (0.62–0.66) | 2014 | 5 | 41 |
| Coryphantha cornifera (DC.) Lem. (= Coryphantha impexicoma Lem. ex C. F. Först.) | 45–55 | 0.82 (0.80–0.84) | 2013 | 6 | 8 |
| Coryphantha odorata Boed. | 20–60 | 0.28 (0.27–0.31) | 2012 | 7 | 54 |
| Coryphantha odorata Boed. | 20–60 | 0.30 (0.28–0.31) | 2013 | 6 | 74 |
| Coryphantha odorata Boed. | 20–40 | 0.28 (0.27–0.29) | 2014 | 5 | 89 |
| Discocactus biformis Walp. | 15–64 | 0.4 | 2009 | 10 | 0 |
| Echinocactus apricus Arechav. (= Notocactus apricus (Arechav.) Backeb.) | 33-68 | 0.49-0.51 | 2011 | 8 | 0 |
| Echinocactus steinmannii Solms (= Mediolobivia steinmannii (Solms) Krainz) | 19-33 | 0.45 | 2013 | 6 | 4 |
| Echinopsis backebergii Werderm. (= Lobivia backebergii (Werderm.) Backeb.) | 58 | 0.86 | 2012 | 7 | 2 |
| Echinopsis backebergii Werderm. (= Lobivia backebergii (Werderm.) Backeb.) | 36–47 | 0.90 (0.89–0.91) | 2014 | 5 | 9 |
| Echinopsis calochlora K. Schum. | 19-39 | 0.78 (0.77–0.79) | 2013 | 6 | 16 |
| Echinopsis hertrichiana (Backeb.) D. R. Hunt (= Lobivia planiceps Backeb.) | 55–68 | 1.0 (0.98–1.1) | 2012 | 7 | 2 |
| Echinopsis pentlandii (Hook.) Salm-Dyck ex A. Dietr. (= Lobivia aculeata Buining) | 17-39 | 0.90 (0.89–0.91) | 2013 | 6 | 18 |
| Eriosyce paucicostata (F. Ritter) Ferryman // = Neochilenia hankeana (C. F. Först.) Dölz | 23-39 | 0.7-0.9 | 2013 | 6 | 63 |
| Eriosyce paucicostata (F. Ritter) Ferryman // = Neochilenia hankeana (C. F. Först.) Dölz | 28-51 | 0.7-0.9 | 2014 | 5 | 83 |
| Eriosyce paucicostata (F. Ritter) Ferryman (= Neochilenia hankeana (C. F. Först.) Dölz) | 100-130 | 0.34-0.39 | 2012 | 7 | 0 |
| Ferocactus echidne (DC.) Britton & Rose | 98-127 | 0.83-0.85 | 2012 | 7 | 0 |
| Ferocactus echidne (DC.) Britton & Rose | 69-98 | 0.83-0.85 | 2013 | 6 | 100 |
| Frailea gracillima (Lem.) Britton & Rose | 15-46 | 0.35-0.39 | 2013 | 6 | 98 |
| Frailea gracillima (Lem.) Britton & Rose | 19-47 | 0.39-0.46 | 2011 | 8 | 57 |
| Frailea pumila (Lem.) Britton & Rose (= Frailea colombiana (Werderm.) Backeb.) | 26-42 | 0.66-0.70 | 2012 | 7 | 40 |
| Frailea pumila (Lem.) Britton & Rose (= Frailea colombiana (Werderm.) Backeb.) | 15-44 | 0.72-0.74 | 2013 | 6 | 0 |
| Frailea pumila (Lem.) Britton & Rose (= Frailea colombiana (Werderm.) Backeb.) | 19-37 | 0.70-0.72 | 2014 | 5 | 34 |
| Frailea schilinzkyana (F. Haage ex K. Schum.) Britton & Rose | 24-44 | 0.49-0.51 | 2014 | 5 | 5 |
| Frailea schilinzkyana (F. Haage ex K. Schum.) Britton & Rose | 15-48 | 0.49-0.51 | 2012 | 7 | 0 |
| Frailea schilinzkyana (F. Haage ex K. Schum.) Britton & Rose | 17-47 | 0.49-0.51 | 2011 | 8 | 0 |
| Matucana paucicostata F. Ritter | 15-20 | 0.8-1.0 | 2012 | 7 | 0 |
| Mediolobivia brachiantha (Wessner) Krainz | 20-25 | 0.6-0.9 | 2013 | 6 | 0 |
| Mediolobivia pectinata Backeb. ex Krainz | 18-32 | 0.60-0.64 | 2013 | 6 | 0 |
| Mediolobivia pectinata Backeb. ex Krainz | 19-33 | 0.61-0.65 | 2014 | 5 | 0 |
| Melocactus bahiensis f. acispinosus (Buining & Brederoo) N. P. Taylor (= Melocactus brederooianus Buining) | 5-45 | 0.58-0.62 | 2013 | 6 | 0 |
| Neomammillaria pyrrocephala (Scheidw.) Britton & Rose | 15-32 | 0.2-0.3 | 2012 | 7 | 0 |
| Parodia ayopayana Cárdenas | 45-81 | 0.19-0.21 | 2009 | 10 | 66 |
| Parodia ayopayana Cárdenas | 50-76 | 0.19-0.21 | 2010 | 9 | 97 |
| Parodia ayopayana Cárdenas | 59-79 | 0.19-0.21 | 2014 | 5 | 88 |
| Parodia camargensis Buining & F. Ritter | 22-29 | 0.19-0.21 | 2012 | 7 | 59 |
| Parodia camargensis Buining & F. Ritter | 20-31 | 0.19-0.21 | 2013 | 6 | 4 |
| Parodia comarapana Cárdenas (= Parodia mairanana Cárdenas) | 57-79 | 0.18-0.21 | 2010 | 9 | 0 |
| Parodia comarapana Cárdenas (= Parodia mairanana Cárdenas) | 59-76 | 0.18-0.21 | 2011 | 8 | 0 |
| Parodia comarapana Cárdenas (= Parodia mairanana Cárdenas) | 61-79 | 0.19-0.21 | 2012 | 7 | 0 |
| Parodia comarapana Cárdenas (= Parodia mairanana Cárdenas) | 73-91 | 0.21-0.23 | 2013 | 6 | 0 |
| Parodia comarapana Cárdenas (= Parodia mairanana Cárdenas) | 68-72 | 0.21-0.23 | 2014 | 5 | 0 |
| Parodia concinna (Monv.) N. P. Taylor | 59-76 | 0.43-0.45 | 2006 | 13 | 0 |
| Rebutia deminuta (F. A. C. Weber) Britton & Rose (= Rebutia robustispina F. Ritter) | 59-98 | 0.3 (0.29–0.31) | 2009 | 10 | 39 |
| Rebutia deminuta (F. A. C. Weber) Britton & Rose (= Rebutia robustispina F. Ritter = Aylostera robustispina) | 55-46 | 0.28 (0.27–0.30) | 2013 | 6 | 61 |
| Rebutia deminuta (F. A. C. Weber) Britton & Rose (= Rebutia robustispina F. Ritter = Aylostera robustispina) | 29-47 | 0.28 (0.27–0.30) | 2014 | 1 | 84 |
| Rebutia deminuta (F. A. C. Weber) Britton & Rose (= Rebutia robustispina F. Ritter = Aylostera robustispina) | 26-46 | 0.28 (0.27–0.30) | 2014 | 5 | 52 |
| Rebutia fiebrigii var. densiseta (= Aylostera fiebrigii (Gürke) Backeb. var. densiseta) | 15-49 | 0.32 (0.28–0.34) | 2012 | 7 | 70 |
| Rebutia fiebrigii var.densiseta (= Aylostera fiebrigii (Gürke) Backeb. var. densiseta) | 19-39 | 0.28 (0.25–0.30) | 2013 | 6 | 77 |
| Rebutia fiebrigii var. densiseta (= Aylostera fiebrigii (Gürke) Backeb. var. densiseta) | 24-48 | 0.29 (0.26–0.31) | 2014 | 5 | 80 |
| Rebutia fiebrigii var. densiseta (= Aylostera fiebrigii (Gürke) Backeb. var. densiseta) | 15-49 | 0.28 (0.25–0.31) | 2014 | 3 | 94 |
| Rebutia pseudodeminuta var. grandiflora (Backeb.) Bruin. & Don. (= Aylostera pseudodeminuta var. grandiflora Backeb. ) | 17-49 | 0.41 (0.39–0.42) | 2012 | 7 | 33 |
| Rebutia pseudodeminuta var. grandiflora (Backeb.) Bruin. & Don. (= Aylostera pseudodeminuta var. grandiflora Backeb. ) | 15-28 | 0.42 (0 4–0.44) | 2013 | 6 | 57 |
| Rebutia pseudodeminuta var. grandiflora (Backeb.) Bruin. & Don. (= Aylostera pseudodeminuta var. grandiflora Backeb. ) | 20-29 | 0.44 (0 4–0.48) | 2014 | 5 | 57 |
| Rebutia pseudodeminuta var. grandiflora (Backeb.) Bruin. & Don. (= Aylostera pseudodeminuta var. grandiflora Backeb. ) | 17-53 | 0.44 (0 4–0.48) | 2017 | 2 | 78 |
| Rebutia pseudodeminuta var. grandiflora (Backeb.) Bruin. & Don. (= Aylostera pseudodeminuta var. grandiflora Backeb. ) | 12-49 | 0.41 (0.39–0.44) | 2018 | 1 | 87 |
Примечание: перед скобками приведено название вида согласно сайта The Plant List (2013), а в скобках указано то название, под которым данный образец числится в коллекции Ботанического сада Петра Великого БИН РАН; пустые ячейки – отсутствие данных.
Из приведённых в табл. 1 данных видно, что в условиях оранжерей Ботанического сада Петра Великого в разные годы один и тот же вид образует разное, но близкое по значению, число семян в плоде, имеющих относительно разную массу 1000 шт. семян. Флуктуация результатов по годам во многом, по-видимому, объясняется числом солнечных дней и дневными температурами в период цветения, а так же агротехническими мероприятиями (частотой и составом подкормок, обработками растений от болезней и вредителей), которые доступны садоводам. В таблице прослеживается факт того, что с увеличением срока хранения семян в лабораторных условиях, всхожесть их у ряда видов некоторых родов снижается.
Рис. 1. Динамика прорастания семян Aylostera fiebrigii (Gürke) Backeb. разных лет урожая. По оси ординат – число проросших семян, по оси абсцисс – дни опыта.
В табл. 2 представлена динамика прорастания семян Parodia comarapana разных лет сбора.
Таблица 2. Динамика прорастания семян Parodia comarapana Cárdenas разных лет сбора.
| Год сбора семян / срок хранения | Дни опыта | Всхожесть, % | ||||||
| 3 | 5 | 7 | 9 | 11 | 18/ | 25 | ||
| 2014 / 5 | 0 | 9 | 32 | 28 | 6 | 3 | 0- | 78 |
| 2013 / 6 | 0 | 0 | 26 | 57 | 9 | 0 | 0- | 97 |
| 2012 / 7 | 0 | 0 | 12 | 41 | 29 | 5 | 2 | 88 |
| 2011 / 8 | 0 | 0 | 0 | 21 | 24 | 14 | 0 | 59 |
| 2010 / 9 | 0 | 0 | 0 | 0 | 3 | 4 | 1 | 8 |
Из данных табл. 3 видно, что в разные годы качество семян одного вида различается. И при хранении в условиях лаборатории семена по-разному теряют всхожесть. Некоторые виды (например, Aylostera pseudodeminuta и Rebutia deminuta до 9-10 лет сохраняют всхожесть семян на высоком уровне. При этом образец семян Aylostera pseudodeminuta за 6 лет хранения потерял всхожесть до 5 %.
Таким образом, для издаваемых и рассылаемых «Перечней семян» (Index seminum, Delectus) можно использовать семена, хранимые в семенной лаборатории более 3-4, максимально до 5 лет. Однако хранить семена кактусов дольше 7 лет всё же не следует, хотя какие-то образцы семян могут быть и жизнеспособными. Длительно (до 10 лет) можно хранить семена лишь тех видов, которые не регулярно цветут и редко образуют семена.
Таблица 3. Динамика прорастания семян видов родов Aylostera и Rebutia разных лет сбора.
| Вид | Срок хранения, год | Дни опыта | Всхожесть, % | |||||||||||
| 6 | 8 | 9 | 11 | 13 | 15 | 20 | 24 | 26 | 28 | 39 | 45 | |||
| Aylostera fiebrigii (Gürke) Backeb. | 9 | 2 | 13 | 6 | 4 | 3 | 4 | 3 | 9 | 44 | ||||
| Aylostera fiebrigii (Gürke) Backeb. | 6 | 5 | 13 | 9 | 4 | 2 | 2 | 3 | 38 | |||||
| Aylostera fiebrigii (Gürke) Backeb. | 5 | 3 | 18 | 11 | 26 | 5 | 3 | 3 | 1 | 2 | 2 | 74 | ||
| Aylostera kieslingii Rausch | 5 | 3 | 13 | 10 | 9 | 15 | 6 | 3 | 2 | 1 | 62 | |||
| Aylostera kupperiana (Boed.) Backeb. | 9 | 6 | 2 | 3 | 1 | 2 | 14 | |||||||
| Aylostera pseudodeminuta (Backeb.) Backeb. | 9 | 3 | 38 | 13 | 1 | 3 | 1 | 2 | 61 | |||||
| Aylostera pseudodeminuta (Backeb.) Backeb. | 7 | 12 | 17 | 9 | 2 | 7 | 3 | 1 | 1 | 52 | ||||
| Aylostera pseudodeminuta (Backeb.) Backeb. | 6 | 2 | 1 | 1 | 1 | 5 | ||||||||
| Aylostera pseudodeminuta (Backeb.) Backeb. | 5 | 3 | 4 | 3 | 1 | 4 | 2 | 17 | ||||||
| Rebutia deminuta (F. A. C. Weber) Britton & Rose | 10 | 6 | 3 | 2 | 7 | 5 | 4 | 2 | 2 | 6 | 37 | |||
| Rebutia fiebrigii var. densiseta | 7 | 1 | 1 | 14 | 7 | 6 | 11 | 2 | 2 | 4 | 48 | |||
| Rebutia fiebrigii var. densiseta | 6 | 7 | 18 | 8 | 1 | 3 | 11 | 9 | 56 | |||||
| Rebutia fiebrigii var. densiseta | 5 | 13 | 16 | 6 | 15 | 2 | 52 | |||||||
| Rebutia pseudodeminuta var. grandiflora (Backeb.) Bruin. & Don. | 7 | 7 | 13 | 7 | 3 | 30 | ||||||||
Примечание: пустые ячейки – нет данных.
Выводы и заключение
Условия закрытого грунта Ботанического сада Петра Великого БИН РАН достаточны для культивирования видов разных родов семейства Cactaceae. Это позволяет значительному большинству видов не только цвести и образовывать плоды, но и формировать полноценные, жизнеспособные семена.
Жизнеспособность семян значительного числа видов разных рода Cactaceae сохраняется длительное время (как минимум 4-5 лет). У некоторых видов семена сохраняют всхожесть до 10 лет.
В семенной лаборатории Ботанического сада, занимающейся отправкой репродуктивных диаспор по «Перечням спор, плодов и семян для обмена» (Index seminum, Delectus) семена видов разных родов семейства Cactaceae можно хранить несколько лет (от 3 до 5, максимум – до 7) и использовать их для рассылки в другие ботанические учреждения страны и мира.
Благодарности
Работа выполнена в рамках госзадания по плановой теме «Коллекции живых растений Ботанического института им. В. Л. Комарова (история, современное состояние, перспективы использования)», номер АААА-А18-118032890141-4.
Литература
Ишмуратова М. М., Ткаченко К. Г. Семена травянистых растений: особенности латентного периода, использование в интродукции и размножении in vitro. Уфа: Гилем, 2009. 116 с.
Ткаченко К. Г. Особенности латентного периода некоторых видов рода Astrophytum (Cactaceae), выращиваемых в Ботаническом саду Петра Великого // Ботаника в современном мире. Труды XIV Съезда Русского ботанического общества и конференции "Ботаника в современном мире" (г. Махачкала, 18-23 июня 2018 г.). Т. 2. Геоботаника. Ботаническое ресурсоведение. Интродукция растений. Культурные растения. Махачкала: АЛЕФ, 2018. С. 326—328.
Ткаченко К. Г. Особенности латентного периода видов рода Mammillaria Haw. (Cactaceae), культивируемых в Ботаническом саду Петра Великого // Vavilovia. 2019. 2(1). С. 49—56. DOI: 10.30901/2658‑3860‑2019‑1‑49-56 .
Bauk K., Flores J., Ferrero C., Pérez-Sánchez R., Las Peñas M. L., Gurvich D. E. Germination characteristics of Gymnocalycium monvillei (Cactaceae) along its entire altitudinal range. Botany. 95(4). P. 419—428. DOI: 10.1139/cjb-2016-0154 .
Bregman R., Bouman F. Seed germination in Cactaceae // Botanical Journal of the Linnean Society. Vol. 86. Issue 4. June 1983. P. 357—374. https://doi.org/10.1111/j.1095-8339.1983.tb00977.x .
Carbajal M. C. N., Sánchez S. S., León H. R. E. Efecto de la escarificación y de la edad de semillas en la germinación de Mammillaria mystax // Zonas Áridas. 2010. 14(1). P. 161—166.
De la Rosa-Manzano E., Briones O. Germination response of the epiphytic Rhipsalis baccifera (J. S. Miller) Stearn to different light conditions and water availability // Int. J. Plant Sci. 2010. 171. P. 267—274.
Flores-Martínez A., Manzanero-Medina G. I., Martínez G. C., Pacheco G. S. As-pectos sobre la ecología y reproducción de Mammillaria kraehenbuehlii (Krainz) Krainz en la Mixteca de Oaxaca, México // Cactáceas y Suculentas Mexicanas. 2002. 47. P. 57—68.
Flores-Martínez A., Manzanero-Medina G. I., Rojas-Aréchiga M., Mandujano M. C., Golubov J. Seed Age Germination Responses and Seedling Survival of an Endangered Cactus That Inhabits Cliffs // Natural Areas Journal. 2008. 28(1). P. 51—57. DOI: 10.3375/0885-8608(2008)282.0.CO;2 .
Genis V. M. F., Manzanero-Medina G. I. Estudio sobre germinación y crecimiento de plántulas en Mammillaria haageana y Melocactus ruestii // Bachelorthesis, Ben-emérita Universidad Autónoma de Puebla. Puebla, México. 2002.
Gurvich D. E., Funes G., Giorgis M. A., Demaio P. Germination characteristics of four argentinean endemic Gymnocalycium (Cactaceae) species with different flowering phenologies. Nat. Areas J. 2008. 28. P. 104—108.
Larrea-Alcázar D. M., López R. P. Seed germination of Corryocactus melanotrichus (K. Schum.) Britton & Rose (Cactaceae): an endemic columnar cactus of the Bolivian Andes // Ecología en Bolivia. Vol. 43 (2). P. 135—140. Agosto, 2008.
Martins L. S. T., Pereira T. S., Carvalho A. S. D. R., Barros C. F., De Andrade A. C. S. Seed germination of Pilosocereus arrabidae (Cactaceae) from a semiarid region of south-east Brazil. Plant Species Biology. 2012. 27(3). P. 191—200. DOI: 10.1111/j.1442-1984.2011.00360.x .
Mihalte L., Sestras R. E., Feszt G. Methods to Improve Seed Germination of Cactaceae Species // Bulgarian Journal of Agricultural Science. 2011. 17 (No 3). P. 288—295.
Rodríguez-Ortega C., Franco M., Mandujano M. C. Serotiny and seed germination in three threatened species of Mammillaria (Cactaceae) // Basic and Applied Ecology. 2006. 7 (6). P. 533—544. DOI: 10.1016/j.baae.2006.04.001 .
Rojas-Arechiga M., Vazquez-Yanes C. Cactus seed germination: a review // Journal of Arid Environments. 2000. 44. P. 85—104 / Article No. jare.1999.0582 .
Santini B. A., Martorell C. Does retained-seed priming drive the evolution of serotiny in drylands? An assessment using the cactus Mammillaria hernandezii // American Journal of Botany. 2013. 100 (2). P. 365—373. DOI: 10.3732/ajb.1200106 .
Soltani E., Ghaderi-Far F., Baskin C. C., Baskin J. M. Problems with using mean germination time to calculate rate of seed germination. Aust. J. Bot. 2015. 63. P. 631—635.
Sosa Pivatto M., Funes G., Ferreras A. E., Gurvich D. E. Seed mass, germination and seedling traits for some central Argentinian cacti // Seed Sci. Res. 2014. № 24. P. 71—77.
Tkachenko K. G. A seed’s quality of some species Cactaceae family, which are grown in Saint-Petersburg // The world of cacti and succulents. 2011. № 7. P. 24—27.
The Plant List. 2013. Version 1.1. URL: http://www.theplantlist.org/ .
